2023 / 06

Следующая статья
DOI: 10.24075/vrgmu.2023.044

ОРИГИНАЛЬНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ

Эффективность устранения костных дефектов челюстей

Г. В. Порядин, Д. А. Еремин, Н. М. Хелминская, В. И. Кравец, И. В. Житарева, А. В. Посадская, Н. М. Краснов, П. А. Шень, М. А. Гурешидзе
Информация об авторах

Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н. И. Пирогова, Москва, Россия

Для корреспонденции: Наталья Михайловна Хелминская
: ул. Островитянова, д. 1, г. Москва, 117997, Россия; ur.liam@ayaksnimlehK

Информация о статье

Вклад авторов: В. И. Кравец, А. В. Посадская, Н. М. Краснов — концепция и дизайн исследования; П. А. Шень, М. А. Гурешидзе, Н. М. Краснов — курация пациентов и обработка данных; И. В. Житарева — статистическая обработка; Н. М. Краснов — подготовка черновика рукописи; Г. В. Порядин, Д. А. Еремин, Н. М. Хелминская — редактирование.

Соблюдение этических стандартов: исследование одобрено этическим кабинетом РНИМУ имени Н. И. Пирогова (протокол №131 от 27 января 2014 г.), от пациентов было получено добровольное информированное согласие на участие в исследовании.

Статья получена: 02.10.2023 Статья принята к печати: 17.10.2023 Опубликовано online: 21.11.2023
|
  1. Зеленова Е. Г., Заславская М. И., Салина Е. В., Рассанов С. П. Микрофлора полости рта: норма и патология: Учебное пособие. Нижний Новгород: Издательство НГМА, 2004; 158 с.
  2. Самойлова М. В., Косырева Т. Ф., Анурова А. Е., Абрамович Р. А., Миронов А. Ю., Жиленкова О. Г. и др. Оценка микробиоценоза полости рта на основе гх-мс-определения плазмалогена и бактериального эндотоксина в ротовой жидкости. Клиническая лабораторная диагностика. 2019; 64 (3): 186–92. DOI: 10.18821/0869-2084-2019-64-3-186-192.
  3. Cardaropoli G, Araújo M, Hayacibara R, Sukekava F, Lindhe J. Healing of extraction sockets and surgically produced —augmented and non-augmented — defects in the alveolar ridge. An experimental study in the dog. J Clin Periodontol. 2005 May; 32 (5): 435–40. DOI: 10.1111/j.1600-051X.2005.00692.x. PMID: 15842256.
  4. Van der Weijden F, Dell'Acqua F, Slot DE. Alveolar bone dimensional changes of post-extraction sockets in humans: a systematic review. J Clin Periodontol. 2009 Dec; 36 (12): 1048– 58. DOI: 10.1111/j.1600-051X.2009.01482.x. PMID: 19929956.
  5. Araújo MG, Lindhe J. Dimensional ridge alterations following tooth extraction. An experimental study in the dog. J Clin Periodontol. 2005 Feb; 32 (2): 212–8. DOI: 10.1111/j.1600051X.2005.00642.x. PMID: 15691354.
  6. Canullo, L, Del Fabbro M, Khijmatgar S, et al. Dimensional and histomorphometric evaluation of biomaterials used for alveolar ridge preservation: a systematic review and network metaanalysis. Clin Oral Invest. 2022; 26: 141–58. DOI: 10.1007/ s00784-021-04248-1.
  7. Stumbras A, Januzis G, Kubilius R, Gervickas A, Juodzbalys G. Randomized clinical trial of bone healing after alveolar ridge preservation using xenografts and allografts vs. plasma rich in growth factors. Journal of Oral Implantology. 2020; 46 (5). DOI: 10.1563/aaid-joi-D-19-00179.
  8. Ku JK, Han M, Yongvikul A, Huh JK, Kim JY. Volumetric analysis of spontaneous bone healing after jaw cyst enucleation. Sci Rep. 2022 Sep 2; 12 (1): 14953. DOI: 10.1038/s41598-022-16921-w. PMID: 36056044. PMCID: PMC9440199.
  9. Chiapasco M, Rossi A, Motta JJ, Crescentini M. Spontaneous bone regeneration after enucleation of large mandibular cysts: A radiographic computed analysis of 27 consecutive cases. J Oral Maxillofac Surg. 2000; 58: 942–8. DOI: 10.1053/ joms.2000.8732.
  10. Iatrou I, Theologie-Lygidakis N, Leventis M. Intraosseous cystic lesions of the jaws in children: a retrospective analysis of 47 consecutive cases. Oral Surgery, Oral Medicine, Oral Pathology, Oral Radiology, and Endodontology. 2009; 107 (4): 485–92.
  11. Ihan Hren N, Miljavec M. Spontaneous bone healing of the large bone defects in the mandible. Int. J. Oral Maxillofac. Surg. 2008; 37 (12): 1111–6. DOI: 10.1016/j.ijom.2008.07.008.
  12. Atieh MA, Alsabeeha NH, Payne AG, Ali S, Faggion CMJ, Esposito M. Interventions for replacing missing teeth: alveolar ridge preservation techniques for dental implant site development. Cochrane Database Syst Rev. 2021; 4: CD010176. DOI: 10. 1002/ 14651 858.
  13. Болезни периапикальных тканей. Общие клинические рекомендации. Постановление №18 Совета Ассоциации общественных объединений «Стоматологическая Ассоциация России» от 02.08.2018; 128 с.
  14. Дробышев А. Ю., Редько Н. А., Свиридов Е. Г., Деев Р. В. Особенности регенерации костной ткани альвеолярного гребня челюстей при применении материала на основе гидроксиапатита. Травматология и ортопедия России. 2021; 27 (1): 9–18. DOI: 10.21823/2311-2905-2021-27-1-9-18.
  15. Моисеева Н. С., Харитонов Д. Ю., Харитонов И. Д., Степанов И. В., Подопригора А. В. Клинико-лабораторная оценка морфологических параметров остеопластических материалов, применяемых при костной аугментации альвеолярного отростка. Вестник новых медицинских технологий. 2021; 15(4): 18–23. DOI: 10.24412/2075-40942021-4-1-3.
  16. Стогов М. В., Дюрягина О. В., Силантьева Т. А., Киреева Е. А., Шипицына И. В., Степанов М. А. Доклиническая оценка эффективности и безопасности нового костнопластического материала ксеногенного происхождения, содержащего в своем объеме ванкомицин и меропенем. Гений ортопедии. 2022; 28 (4): 565–73. DOI: 10.18019/1028-4427-2022-28-4565-573.
  17. Han JJ, Moon JE, Lee E-H, Yang HJ, Hwang SJ. Clinical and Radiographic Outcomes of Dental Implant after Maxillary Sinus Floor Augmentation with RhBMP-2/Hydroxyapatite Compared to Deproteinized Bovine Bone. PLOS ONE. 2022; 17: e0273399. DOI: 10.1371/journal.pone.0273399.
  18. Ho SKC, Peel SAF, Hu ZM, Sándor GKB, Clokie CML. Augmentation of the Maxillary Sinus: Comparison of Bioimplants Containing Bone Morphogenetic Protein and Autogenous Bone in a Rabbit Model. J Can Dent Assoc. 2010; 76: 108.
  19. Блаженко А. Н., Родин И. А., Понкина О. Н., Муханов М. Л., Самойлова А. С., Веревкин А. А. и др. Влияние А-PRPтерапии на репаративную регенерацию костной ткани при свежих переломах костей конечностей. Инновационная медицина Кубани. 2019; 3 (15): 32–8.
  20. Бурыкин К. И., Паршиков М. В., Ярыгин Н. В., Светлов Д. В., Говоров М. В., Чемянов И. Г. и др. Возможности и перспективы использования обогащенной тромбоцитами плазмы в лечении переломов и дефектов костей. Политравма. 2020; 3: 108–19.
  21. Самодай В. Г. Стариков А. О. Калашников П. И. Лиофилизированные аллогенные факторы роста в травматологии и ортопедии как перспективное направление регенеративной медицины. Политравма. 2019; 4: 15–28.
  22. Файн А. М., Ваза А. Ю., Гнетецкий С. Ф., Скуратовская К. И., Бондарев В. Б., Боголюбский Ю. А. и др. Доступные способы повышения регенераторного потенциала пластического материала в неотложной травматологии. Часть 1. Использование аутологичной богатой тромбоцитами плазмы крови. Трансплантология. 2022; 14 (1): 79–97. DOI: 10.23873/2074-0506-2022-14-1-79-97.
  23. Skwarcz S, Bryzek I, Gregosiewicz A, Warda E, Gaweda K, Tarczynska M, et al. Autologous activated platelet-rich plasma (PRP) in bone tissue healing - does it work? Assessment of PRP effect on bone defect healing in animal models. Polish Journal of Veterinary Sciences. 2019; 22 (1): 109–15. DOI: 10.24425/ pjvs.2019.127077.
  24. Васильев А. В., Кузнецова В. С., Галицына Е. В., Бухарова Т. Б., Осидак Е. О., Фатхудинова Н. Л., и др. Биосовместимость и остеогенные свойства коллаген-фибронектинового гидрогеля, импрегнированного BMP-2. Стоматология. 2019; 98 (6–2): 5–11. DOI: 10.17116/stomat2019980625.
  25. Конев В. А., Лабутин Д. В., Божкова С. А. Экспериментальное обоснование клинического применения стимуляторов остеогенеза в травматологии и ортопедии (обзор литературы). Сибирское медицинское обозрение. 2021; 4: 5–17. DOI: 10.20333/25000136-2021-4-5-17.
  26. Кузнецова В. С., Васильев А. В., Бухарова Т. Б., Недорубова И. А., Гольдштейн Д. В., Кулаков А. А. Преимущества и недостатки костно-пластических материалов, активированных BMP-2 и несущими его ген конструкциями. Стоматология. 2023; 102 (4): 76–80. DOI: 10.17116/stomat202310204176.
  27. Петров И. Ю., Ларионов Е. В., Ипполитов Ю. А., Бут Л. В., Петров А. И. Морфогистохимические исследования остеопластического материала на основе гиалуроновой кислоты, хондроитинсульфата и недеминерализованного костного коллагена для восстановления костных дефектов в эксперименте. Вестник новых медицинских технологий. 2018; 3: 41–6. DOI: 10.24411/2075-4094-2018-16038.
  28. Skwarcz S, Bryzek I, Gregosiewicz A, Warda E, Gaweda K, Tarczynska M, et al. The effect of activated platelet-rich plasma (PRP) on tricalcium hydroxyapatite phosphate healing in experimental, partial defects of long bone shafts in animal models. Polish Journal of Veterinary Sciences. 2019; 22 (2): 243–50. DOI: 10.24425/pjvs.2019.127092.